EXPERIMENTACION EN QUIMICA ANALÍTICA
PRACTICAS
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Practica |
Título |
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Nº 1 |
DETERMINACIÓN ESPECTROFLUORIMÉTRICA DE
QUININA EN AGUA TÓNICA |
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Nº 2 |
VALORACIÓN POTENCIOMÉTRICA DE UNA
MEZCLA DE YODURO Y CLORURO CON ION PLATA |
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Nº 3 |
DETERMINACIÓN CONJUNTA DE SULFAQUINOXALINA Y SULFAMETACINA
MEDIANTE ESPECTROFOTOMETRÍA |
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Nº 4 |
DETERMINACIÓN POTENCIOMÉTRICA DE
FLUORUROS EN ENJUAGUES BUCALES |
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Nº 5 |
DETERMINACIÓN DE ANTIDEPRESIVOS MEDIANTE CROMATOGRAFIA
LÍQUIDA DE ALTA PRESIÓN (HPLC) |
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Nº 6 |
DETERMINACION EXTRACTOESPECTROFOTOMÉTRICA DE AMARANTO Y
ERITROSINA |
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Nº 7 |
DETERMINACIÓN DE Cu y Zn EN VINAGRE MEDIANTE ABSORCIÓN
ATÓMICA |
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Nº 8 |
DETERMINACIÓN DE SODIO Y POTASIO EN
AGUAS NATURALES MEDIANTE FOTOMETRÍA DE EMISIÓN EN LLAMA |
PROFESORES
|
GRUPO I |
|
PRACTICAS |
M-14 |
Mi-15 |
J-16 |
V-17 |
L-20 |
M-21 |
Mi-22 |
J-23 |
|
1 y 2 |
PABLO
FERNANDEZ LÓPEZ |
|
3 y 4 |
GREGORIO
CASTAÑEDA PEÑALVO |
|
5 y 6 |
VIRGINIA
RODRIGUEZ ROBLEDO |
|
7 y 8 |
JOSE MARIA
LEMUS GALLEGO |
|
GRUPO II |
|
PRACTICAS |
L-26 |
M-27 |
Mi-28 |
J-29 |
V-30 |
L-2 |
M-3 |
Mi-4 |
|
1 y 2 |
PABLO
FERNANDEZ LÓPEZ |
|
3 y 4 |
ANA MARÍA
CONTENTO SALCEDO |
|
5 y 6 |
VIRGINIA
RODRIGUEZ ROBLEDO |
|
7 y 8 |
JOSE MARIA
LEMUS GALLEGO |
|
GRUPO I |
|
|
Mi-14 |
J-15 |
V-16 |
L-19 |
M-20 |
Mi-21 |
J-22 |
V-23 |
|
P 1 |
G 1 |
G 2 |
G 7 |
G 8 |
G 5 |
G 6 |
G 3 |
G 4 |
|
P 2 |
G 2 |
G 1 |
G 8 |
G 7 |
G 6 |
G 5 |
G 4 |
G 3 |
|
P 3 |
G 3 |
G 4 |
G 1 |
G 2 |
G 7 |
G 8 |
G 5 |
G 6 |
|
P 4 |
G 4 |
G 3 |
G 2 |
G 1 |
G 8 |
G 7 |
G 6 |
G 5 |
|
P 5 |
G 5 |
G 6 |
G 3 |
G 4 |
G 1 |
G 2 |
G 7 |
G 8 |
|
P 6 |
G 6 |
G 5 |
G 4 |
G 3 |
G 2 |
G 1 |
G 8 |
G 7 |
|
P 7 |
G 7 |
G 8 |
G 5 |
G 6 |
G 3 |
G 4 |
G 1 |
G 2 |
|
P 8 |
G 8 |
G 7 |
G 6 |
G 5 |
G 4 |
G 3 |
G 2 |
G 1 |
|
|
|
GRUPO II |
|
|
L-26 |
M-27 |
Mi-28 |
J-29 |
V-30 |
L-2 |
M-3 |
Mi-4 |
|
P 1 |
G 1 |
G 2 |
G 7 |
G 8 |
G 5 |
G 6 |
G 3 |
G 4 |
|
P 2 |
G 2 |
G 1 |
G 8 |
G 7 |
G 6 |
G 5 |
G 4 |
G 3 |
|
P 3 |
G 3 |
G 4 |
G 1 |
G 2 |
G 7 |
G 8 |
G 5 |
G 6 |
|
P 4 |
G 4 |
G 3 |
G 2 |
G 1 |
G 8 |
G 7 |
G 6 |
G 5 |
|
P 5 |
G 5 |
G 6 |
G 3 |
G 4 |
G 1 |
G 2 |
G 7 |
G 8 |
|
P 6 |
G 6 |
G 5 |
G 4 |
G 3 |
G 2 |
G 1 |
G 8 |
G 7 |
|
P 7 |
G 7 |
G 8 |
G 5 |
G 6 |
G 3 |
G 4 |
G 1 |
G 2 |
|
P 8 |
G 8 |
G 7 |
G 6 |
G 5 |
G 4 |
G 3 |
G 2 |
G 1 |
PRACTICAS
|
PRÁCTICA Nº 1 |
|
DETERMINACIÓN ESPECTROFLUORIMÉTRICA DE QUININA EN AGUA
TÓNICA |
PROCEDIMIENTO
-
Preparar disoluciones de 100, 200, 300, 400 y 500 ppb
a partir de una disolución de sulfato de quinina de 2.5 ppm y
enrasar a 25 ml con H2SO4 0.1 N.
-
Registrar los
espectros de excitación y emisión de una de las muestras y medir la
intensidad de fluorescencia a 350 nm de excitación y 450 nm de
emisión de todas ellas para construir la recta de calibrado.
-
Pasar el contenido de un agua tónica a un vaso de
precipitado y agitar vigorosamente a temperatura ambiente durante 10
minutos.
-
Tomar 1.0 ml y añadir la cantidad necesaria de H2SO4
concentrado (36 N) para que en un volumen final de 250 ml sea 0.1 N.
-
Registrar los espectros de excitación y emisión, comprobando que en
estas condiciones la fluorescencia del agua tónica es debida
únicamente a la quinina.
-
Medir la fluorescencia a 350 nm de
excitación y 450 nm de emisión calculando la concentración de
quinina en el agua tónica a partir de la recta de calibrado.
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MATERIALES |
PRODUCTOS |
|
* Espectrofluorímetro |
* Agua tónica |
|
* Matraces de 25 ml. |
* H2SO4 |
|
* Pipetas graduadas. |
* Bisulfato de quinina |
|
* Vaso precipitado. |
|
|
* Agitador magnético con núcleo. |
|
|
PRÁCTICA Nº 2 |
|
VALORACIÓN POTENCIOMÉTRICA DE UNA MEZCLA DE
YODURO Y CLORURO CON ION PLATA |
PROCEDIMIENTO
-
Conectar el potenciómetro a la red y colocarlo en
fase de calentamiento de acuerdo con las instrucciones.
-
Preparar e instalar los electrodos de acuerdo con las
instrucciones.
-
Pipetear 10 ml. de disolución problema a valorar e
introducirlos en un vaso de precipitados de 500 ml. diluyendo con
agua hasta unos 300 ml.
-
Colocar en el interior del vaso un núcleo agitador e instalar
todo el sistema de agitación.
-
Llenar la bureta con la disolución de AgNO3 0.1 N
e instalarla de forma que su pico toque la disolución a valorar.
-
Conectar el agitador a la red y mantener una agitación suave
pero persistente durante toda la valoración, interrumpiéndola
solamente para la lectura del potencial.
-
Introducir los electrodos (Ag-calomelanos) en el vaso de forma
que no puedan ser rozados por el núcleo agitador.
-
Colocar el mando en mV y leer el valor de mV en este momento.
-
Añadir, desde la bureta, sucesivas porciones conocidas de AgNO3
0.1 N y tras un breve tiempo de agitación leer lo que marca el
aparato.
-
Representar gráficamente sobre papel milimetrado:
a)Variación del potencial (E) en función del volumen (V) de
AgNO3 añadido.
b) Primera derivada.
c) Segunda derivada.
|
MATERIALES |
PRODUCTOS |
|
* Potenciómetro |
* Disolución problema |
|
* Electrodo de Ag. |
* AgNO3 0.1 N |
|
* Electrodo de calomelanos |
|
|
* Vaso 500 ml. |
|
|
* Bureta |
|
|
* Agitador y núcleo |
|
|
* Pipeta aforada de 10 ml. |
|
|
* Frasco lavador |
|
|
PRÁCTICA Nº 3 |
|
DETERMINACIÓN CONJUNTA DE SULFAQUINOXALINA Y SULFAMETACINA
MEDIANTE ESPECTROFOTOMETRÍA |
OBJETO
PROCEDIMIENTO
-
Preparar dos disoluciones madres de 100 mg/L una de
Sulfaquinoxalina (SQX, 50% etanol) y otra de Sulfametacina (SMT, 50%
etanol), disolviendo aproximadamente 10 mg de cada una de las drogas
en 100 mL de volumen final.
-
A partir de las disoluciones madres, por dilución, preparar en
matraces de 25 mL disoluciones de 4, 8, 12 y 16 mg/L de cada una de
las sulfamidas, añadiendo en todos los casos 5 mL de disolución
tampón NH4Cl/NH3 0.5 M de pH = 10 y mantener
el porcentaje de etanol constante, teniendo en cuenta el contenido
de etanol de la muestra más concentrada.
-
Preparar un blanco en las mismas condiciones que el resto de las
muestras (% de etanol y tampón).
-
Registrar los espectros de absorción de cada una de las
disoluciones preparadas anteriormente frente al blanco y en el
rango de longitudes de onda comprendido entre 200 y 315 nm a una
velocidad de barrido de 600 nm/min. nm.
-
Una vez obtenidos los espectros de absorción, buscar las dos
longitudes de onda de interés, para el establecimiento del sistema
de ecuaciones posterior (aquellas en que los espectros de las dos
sulfamidas presenten una absorbancia elevada).
-
Comprobar que para las longitudes de onda seleccionadas y en el
rango de concentración estudiado la respuesta es de tipo lineal. Si
esto es así, obtener el valor medio de la absortividad de cada una
de las sulfamidas a las longitudes de onda seleccionadas y comparar
con los valores obtenidos a partir de las ecuaciones de las
rectas de calibrado.
-
Registrar el espectro de absorción de una mezcla problema de SQX
y SMT y calcular la concentración de cada una de las drogas usando
un sistema de ecuaciones.
|
MATERIAL |
REACTIVOS |
|
* 10 matraces de 25 mL |
* Sulfaquinoxalina |
|
* 2 pipetas de 2 mL |
* Sulfametacina |
|
* 2 pipetas de 5 mL |
* Tampón NH4Cl/NH3 de pH = 10 |
|
* 1 frasco lavador |
* Etanol. |
|
* 1 gotero de agua |
|
|
PRÁCTICA Nº 4 |
|
DETERMINACIÓN POTENCIOMÉTRICA DE FLUORUROS EN ENJUAGUES
BUCALES |
FUNDAMENTO
-
El electrodo selectivo de fluoruros se emplea ampliamente en la
determinación de fluoruros en una gran diversidad de materiales.
-
Un
requisito necesario para su correcta utilización es la necesaria
utilización de una disolución amortiguadora de la fuerza iónica
total (TISAB) para ajustar todos los estándares y las muestras
problemas a prácticamente la misma fuerza iónica; cuando este
reactivo se usa, se mide más la concentración de fluoruro que su
actividad.
-
El pH del amortiguador es alrededor de 5, un nivel al
cual el ión F es la especie predominante en las especies que
contienen flúor.
-
El amortiguador también contiene ácido ciclohexilamino-dinitrilotetraacético,
el cual forma quelatos
estables con Fe (III) y Al (III), liberando el ión fluoruro de sus
complejos con estos cationes.
PROCEDIMIENTO
-
En matraces de plástico de 25.0 mL, preparar disoluciones
conteniendo concentraciones conocidas de F, variables entre 1 y 5
mg/L, adicionando 10 mL de la disolución TISAB y enrasando con agua
desionizada.
-
Se determina el potencial de cada una de ellas y se
construye la recta de calibrado representado el valor del potencial
frente al logaritmo de la concentración de fluoruros.
-
A continuación y sobre un matraz de plástico de 25.0 mL se
añade 0,2 mL de la disolución problema (enjuague bucal), 10 mL de TISAB y enrasando con agua desionizada, agitar bien y medir el
potencial, calculando a continuación los mg/L de la disolución
comercial analizada.
|
MATERIAL |
REACTIVOS |
|
* Pipetas de plástico. |
*Solución TISAB |
|
* Potenciómetro con electrodo selectivo de fluoruros y
electrodo de referencia. |
* Solución patrón de fluoruros de 25 mg/L, (a partir de
NaF ) |
|
* Matraces aforados de 25 mL de plástico. |
|
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PRÁCTICA Nº 5 |
|
DETERMINACIÓN DE ANTIDEPRESIVOS MEDIANTE CROMATOGRAFIA
LÍQUIDA DE ALTA PRESIÓN (HPLC) |
OBJETO
-
El objeto de esta
práctica es la separación y determinación de tres antidepresivos
pertenecientes al grupo de los inhibidores de la recaptación de
serotonina: fluoxetina, fluvoxamina y trazodona mediante HPLC.
-
La modalidad
utilizada en este caso es cromatografía líquida de partición con
fases ligadas y en fase inversa.
-
La elución de los
compuestos depende de su naturaleza química y las condiciones
cromatográficas utilizadas.
-
En esta práctica la
columna utilizada es de fases ligadas apolar, de 5 µm de tamaño de
partícula y de 15 cm de longitud.
-
Los componentes
eluidos son detectados a una longitud de onda a la cual los
compuestos estudiados presentan una absorbancia considerable
-
Las condiciones de
trabajo son las siguientes:
FASE MÓVIL:
Acetonitrilo: 75 mM tampón fosfato pH=2.5 (40:60).
COLUMNA: C18
FLUJO: 1.5 mL/min.
DETECCIÓN: 230 nm
EXPERIMENTAL
En matraces de 5 mL
se preparan disoluciones que contenga 4, 6, 8 y 10 ppm de cada uno
de los compuestos, a partir disoluciones de 100 ppm de cada
antidepresivo en agua desionizada.
Tomar 1 ml del
preparado farmacéutico y diluirlo 100 veces con agua desionizada
(calidad Milli-Q) para obtener la disolución “A”. Una fracción de la
disolución “A” se vuelve a diluir 5 veces con agua desionizada en un
matraz de 10 ml, obteniendo la disolución “B”. Por último, una
fracción de la disolución “B” se introducirá en el cromatógrafo de
líquidos.
En las condiciones
instrumentales y químicas seleccionadas se procede a la obtención de
los cromatogramas correspondientes a las disoluciones del calibrado
y de la muestra problema. Una vez obtenidos, se construye la
correspondiente recta de calibrado de cada antidepresivo y a partir
de ellas se calcula la concentración del principio activo en la
muestra problema.
RESULTADOS
- Eficiencia para cada compuesto (N).
- Factor de capacidad (K’).
- Factor de separación.
- Resolución cromatográfica entre los dos picos obtenidos.
|
MATERIAL |
PRODUCTOS |
|
* Cromatógrafo |
*
Disolución de fluoxetina (100 mg/L) |
|
* Matraces de 100,
25 y 10 mL |
*
Disolución de fluvoxamina (100 mg/L) |
|
* Pipetas |
*
Disolución de trazodona (100 mg/L) |
|
* Jeringuillas |
* Muestra
Problema |
|
PRÁCTICA Nº 6 |
|
DETERMINACION EXTRACTOESPECTROFOTOMÉTRICA DE AMARANTO Y
ERITROSINA |
OBJETO
-
El objeto de esta práctica es la determinación simultánea de dos
colorantes: Amaranto y Eritrosina en una bebida.
-
En primer lugar se
realiza una separación previa de estos compuestos mediante
extracción líquido-liquido utilizando metil-isobutilcetona para
extraer Eritrosina permaneciendo el Amaranto en fase acuosa.
-
Posteriormente se determina cada colorante mediante medidas
espectrofotométricas en el máximo de absorción.
RECTAS DE CALIBRADO
-
En matraces de 25 mL se adicionan volúmenes variables de la
disolución patrón de Eritrosina y Amaranto de manera que la
concentración de cada uno de ellos sea 2, 4, 6, 8 y 10 mg/L, etanol
hasta que el contenido total sea de 25% del volumen final, 2.5 mL de
tampón HAc/Ac- de pH = 4.8 y agua destilada hasta enrase.
-
Transferir 10 mL de cada una de las disoluciones a embudos de
decantación de 100 mL y adicionar sobre estos 10 mL de
metil-isobutilcetona. Agitar los embudos durante 2 minutos depositar
los embudos en sus soportes, separar las fases y centrifugar la fase
orgánica.
-
Realizar los espectros de absorción de cada una de las fases para
uno de los calibrados y seleccionar las longitudes de onda
correspondientes a los máximos de absorción.
-
Para las demás
disoluciones medir la absorbencia de la fase acuosa y orgánica a las
longitudes de onda seleccionadas.
-
Se calcula el contenido de cada compuesto en mg/L en la muestra
problema mediante las rectas de calibrado.
|
PRÁCTICA Nº 7 |
|
DETERMINACIÓN DE Cu y Zn EN VINAGRE MEDIANTE ABSORCIÓN
ATÓMICA |
PRINCIPIO
PROCEDIMIENTO
-
Preparación de las muestras
de vinagres
:
No se necesita preparación especial. En caso de elevada
concentración realizar una o varias diluciones hasta quedar dentro
del rango de medida.
-
Determinación:
Diluir partes alicotas de las disoluciones de Cu o Zn
(250 mg/L)
con ácido
acético al 5% para obtener soluciones de Cu de 0.25; 0.5; 2.0 y
5.0 mg/L y de Zn de 0.25; 0.5; 1.0 y 2.0 mg/L.
Aspirar las soluciones patrón y construir las correspondientes
rectas de calibrado. Las longitudes de onda de medida serán 213,8
nm para el Zn y 324,8 nm para el Cu.
INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS
|
MATERIAL Y APARATOS |
REACTIVOS |
|
* Espectrofotómetro de absorción atómica, con llama
aire-acetileno. |
* Acido acético glacial. |
|
* Lámpara de cátodo hueco de Zn. |
* Cinc nitrato R.A. |
|
* Lámpara de cátodo hueco de Cu. |
* Cobre nitrato R.A. |
|
* Pipetas |
* Disolución 250 mg/L de Cu. |
|
|
* Disolución 250 mg/L de Zn. |
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PRÁCTICA Nº 8 |
|
DETERMINACIÓN DE SODIO Y POTASIO EN AGUAS NATURALES MEDIANTE
FOTOMETRÍA DE EMISIÓN EN LLAMA |
PRINCIPIO
-
Se pueden determinar cantidades traza de sodio y potasio por
fotometría de emisión de llama a las longitudes de onda de 589.0 y
766.5 nm, respectivamente.
-
Se pulveriza la muestra en una llama
aire-acetileno y la excitación se realiza en condiciones controladas
y reproducibles.
PROCEDIMIENTO
-
Preparar
una serie de disoluciones
en matraces de 25 mL de 1, 3, 7 y
19 mg/L de Na y K respectivamente,
para establecer las correspondientes
curvas
de calibración.
-
Medir la intensidad de radiación emitida por los patrones de sodio y
las muestras a 589.0 nm.
-
Por referencia directa a la curva de calibración calcular la
concentración de sodio expresada en mg/L de las muestras.
-
Para la determinación de potasio, proceder igual que en la
determinación de sodio, midiendo la emisión a 766.5 nm.
|
MATERIALES-EQUIPO |
PRODUCTOS |
|
* Espectrofotómetro de absorción-emisión atómica con
llama aire-acetileno Varian 300. |
* Solución madre de 500 mg/L de sodio y 500 mg/L de
potasio. |
|
* Muestras de aguas |
|